Reação à peroxidase na carne animal. A reação da peroxidase é positiva

2 ml de filtrado, 5 gotas de uma solução alcoólica de benzidina a 0,2% e 2 gotas de uma solução de peróxido de hidrogênio a 1% são colocadas em um tubo de ensaio.

O extrato da carne fresca de animais saudáveis ​​adquire uma coloração verde-azulada, tornando-se marrom após alguns minutos. Nos extratos de carne de animais doentes, sobrecarregados e mortos em agonia, a cor não muda, mas às vezes aparece uma cor verde-azulada, com muito atraso e rapidamente se transforma em marrom.

A reação à peroxidase pode ser realizada sem preparação de extrato: aplicar 2 gotas de solução de peróxido de hidrogênio a 1% e 5 gotas de solução de benzidina a 0,2% em um corte fresco de carne. O aparecimento de uma mancha azul esverdeada seguida de uma transição para marrom é considerado uma reação positiva, a ausência de uma mancha colorida é considerada uma reação negativa.

REAÇÃO DE FORMOL

A carne de animais mortos após agonia prolongada ou condição patológica grave pode ser reconhecida pela reação ao formol.

A amostra de carne está isenta de gordura e tecido conjuntivo. Uma amostra de 10 g é colocada em um almofariz, bem triturada com tesoura, e são adicionados 10 ml de soro fisiológico. solução e 10 gotas de hidróxido de sódio 0,1 N. A carne é moída com pilão. A pasta resultante é transferida com uma vareta de vidro para um frasco e aquecida até à ebulição para precipitar as proteínas. O frasco é resfriado com água da torneira, após o que seu conteúdo é neutralizado pela adição de 5 gotas de solução de ácido oxálico a 5% e passado para um tubo de ensaio através de papel de filtro. O extrato turvo é filtrado uma segunda vez ou centrifugado.

Progresso da reação. 2 ml de extrato são colocados em um tubo de ensaio e 1 ml de formalina neutra é adicionada.

Um extrato da carne de um animal morto em agonia, gravemente doente ou abatido após a morte transforma-se em um coágulo denso; no extrato da carne de um animal doente caem flocos, enquanto o extrato da carne de um animal são permanece líquido e transparente, às vezes aparece uma leve turvação.

A formalina é primeiro neutralizada com hidróxido de sódio 0,1 N usando um indicador que consiste em uma mistura igual de soluções aquosas a 0,2% de podridão neutra e azul de metileno até que a cor mude de violeta para verde.

Avaliação sanitária da carne

É realizado com base nos resultados do estudo e inserido em uma apostila.

Caso sejam detectados sinais que indiquem que o animal foi morto durante a agonia (hipóstase, sangramento insuficiente, falta de reação no local do esfaqueamento), as carcaças e órgãos são submetidos a descarte técnico.

Não existem microrganismos patogênicos na carne de um animal saudável, o pH está na faixa de 5,7-6,2, a reação à peroxidase é positiva.

Carne com pH igual ou superior a 6,3 e reação negativa à peroxidase é considerada suspeita de origem de animal doente ou morto à força.

ESPÉCIES DE CARNE

A tentativa de fazer passar a carne de um tipo de animal pela carne de outro tipo de animal, geralmente mais valiosa, é chamada de falsificação de espécie e pode ocorrer em mercados de redes varejistas e estabelecimentos de alimentação. Portanto, um veterinário deve ser capaz de determinar a espécie de carne. Normalmente, a falsificação de espécies utiliza carcaças de animais semelhantes em tamanho, forma e outras características. Por isso, costumam tentar fazer com que a carne de cavalo seja de carne bovina e vice-versa (em alguns países onde a carne de cavalo é mais valorizada), as carcaças de cães grandes são feitas de cordeiro, os gatos são tentados de ser feitos de coelhos e nozes. Para determinar as espécies de carne, são utilizados métodos objetivos e subjetivos.

Métodos subjetivos de determinação das espécies de carne. Os métodos subjetivos incluem configuração, características morfológicas e organolépticas da carne, etc.

Indicadores organolépticos

Determinação pela cor da carne

A cor da carne e a estrutura do tecido muscular dependem da idade, sexo, gordura do animal e outros motivos.

A carne do gado pode ser de vermelho claro a vermelho escuro e tem seção transversal de granulação grossa.

Carne de cavalo vermelho escuro

Após o cozimento, a carne de porcos e bezerros adquire uma cor branca ou cinza claro, a carne de bovinos, ovinos e cavalos - uma cor cinza escuro.

Os métodos organolépticos incluem a determinação de: aparência e cor; condição dos músculos no corte; consistência; cheiro; transparência e aroma do caldo.

Cada imagem selecionada é analisada separadamente.

Equipamentos e materiais

• · Balanças de laboratório de uso geral de acordo com GOST 24104--2001 4 com limite máximo de pesagem de 200 g, erro permitido de 20 mg.
• · Bisturi médico de acordo com GOST 21240--89.
• · Pinças médicas de acordo com GOST 21241--89.
• · Moedor de carne doméstico de acordo com GOST 4025--95 ou moedor de carne elétrico doméstico de acordo com GOST 20469--95. Frasco cônico Kn-100 de acordo com GOST 25336--82.
• Banho-maria elétrico
• · Tesouras médicas de acordo com GOST 21239--93.
• · Faca.
• · Funis de acordo com GOST 25336--82, tipo VF
• · Cilindros de medição de acordo com GOST 1770--74. com capacidade de 25.100 cm 3.
• · Copos conforme GOST 25336--82, tipo B ou N. com capacidade de 50 cm-".
• · Relógio de vidro.
• · Varetas de vidro.
• · Papel de filtro de acordo com GOST 12026--76.
• · Gaze doméstica conforme GOST 11109-90.
• · Água destilada de acordo com GOST 6709--72.

A determinação da aparência e superfície da carcaça, tecido adiposo tegumentar e interno e membrana serosa abdominal é realizada por exame externo.

Determinando a condição dos músculos no corte

Os músculos da coxa são cortados através das fibras musculares. Para determinar o atributo muscular, papel filtro é aplicado na superfície do corte muscular por 2 s.

Para determinar a viscosidade muscular, toque a superfície da seção muscular com o dedo. A cor dos músculos é determinada visualmente à luz difusa do dia.

Determinação de consistência

Na superfície da carcaça do coelho, na região dos músculos femorais, é formado um buraco com os pulmões e monitorado o tempo de seu nivelamento.

Detecção de odor

Preparando-se para o teste

Para determinar o cheiro de gordura, pelo menos 20 g de tecido adiposo interno são retirados de cada amostra. Cada amostra é esmagada com tesoura, derretida em béqueres em banho-maria e resfriada a uma temperatura de 20ºC. 1 COM.

GOST R 53228--2 (GOST 20235.0-74 S. 3) está em vigor no território da Federação Russa

Fazendo o teste

O cheiro da gordura interna é determinado organolepticamente, mexendo-a com uma vareta de vidro limpa.

O cheiro da superfície da carcaça e da cavidade abdominal é determinado organolepticamente.

Para determinar o cheiro das camadas profundas, faça um corte no rato com uma faca limpa. É dada especial atenção ao cheiro das camadas de tecido muscular adjacentes aos ossos.

Determinando a clareza e o aroma do caldo

Preparando-se para análise

De cada amostra (carcaça), pedaços de músculo pesando 25 g cada são cortados com bisturi da região da coxa, omoplata, dorso, bumbum e picados duas vezes em um moedor de carne.

A carne picada é bem misturada e pesada.

Para preparar o caldo de carne, pesar 20 g de carne picada em balança de laboratório, colocar em um frasco cônico com capacidade para 100 cm3 e despejar 60 cm3 de forno destilado. O conteúdo do frasco é bem misturado. O frasco é coberto com um vidro de relógio e colocado em banho-maria fervente por 10 minutos.

Fazendo análise

O cheiro do caldo de carne é determinado durante o processo de aquecimento a 80 "C - 85" C no momento do aparecimento dos vapores que escapam do frasco entreaberto, sentindo o seu aroma. A transparência do caldo é determinada visualmente examinando 20 cm 3 de caldo despejados em uma proveta com capacidade de 25 cm 3 e diâmetro de 20 mm.

Método organoléptico

A carne de coelho (doméstica) pesando 2 kg é boa, não foram observados hematomas, nem odores estranhos, nem coágulos sanguíneos, nem manchas de bile. O cheiro é característico deste tipo de carne, a cor é branco-rosada. O caldo ficou transparente, sem cheiro característico, o que significa que a carne está fresca.

Reação peroxidase

A essência da reação é que o peróxido de hidrogênio, na presença da enzima peroxidase, oxida a benzidina, formando a paraquinona diimida, que, com a benzidina suboxidada, produz um composto azul esverdeado que fica marrom (reação de cor). A atividade da peroxidase, como qualquer enzima, depende do pH do ambiente. 2 ml do extrato filtrado (1:4) são despejados em um tubo de ensaio, são adicionadas 5 gotas de uma solução alcoólica de benzidina a 0,2%, o conteúdo é agitado, após o que são adicionadas 2 gotas de uma solução de peróxido de hidrogênio a 1%. A reação é lida dentro de 1-2 minutos.

O extrato adquiriu primeiro uma cor azul esverdeada e, em 1-2 minutos, tornou-se marrom-acastanhado. Esta análise indica que a carne é fresca.

Ajude-me a encontrar uma foto ou imagem que mostre a interação do peróxido de hidrogênio com batatas ou carne. e obtive a melhor resposta

Resposta de Elena Kazakova[guru]

Usando experimento, determine a presença de enzimas em tubérculos de batata,
quebrando o peróxido de hidrogênio
Equipamentos, reagentes. Suporte de laboratório com tubos de ensaio, pipetas com marcas de 1 ml; pedaços de batata crua e cozida (ou carne crua e cozida); peróxido de hidrogênio (solução a 3% ou solução a 0,5%); lasca; partidas.
Progresso. Fatias de batata crua são colocadas em um tubo de ensaio, as cozidas em outro (fatias de carne crua e cozida podem ser colocadas no terceiro e quarto tubos de ensaio, respectivamente). Usando uma pipeta, 0,5 ml de uma solução de peróxido de hidrogênio (H2O2) a 3% é despejada em cada tubo de ensaio.
Quando as bolhas forem liberadas, coloque uma lasca fumegante em cada um desses tubos de ensaio.
Observações.
Em tubos de ensaio com batata crua (ou carne), será observada rápida formação de bolhas (“fervura”). Uma lasca fumegante colocada em um tubo de ensaio explode em chamas.
Em tubos de ensaio com batatas cozidas e carne cozida, o peróxido de hidrogênio não se decompõe e nenhuma bolha é liberada.
A discussão dos resultados. A formação de bolhas em tubos de ensaio com batata crua ou carne é explicada pela presença nas células da enzima peroxidase - nas plantas (ou catalase - nos músculos), que decompõe o peróxido de hidrogênio em água e oxigênio. O oxigênio molecular é liberado na forma de bolhas. A presença de oxigênio pode ser determinada por meio de uma lasca fumegante, que se inflama se for introduzida em um tubo de ensaio com emissão de bolhas.
Em tubos de ensaio com batatas cozidas e carne cozida, o peróxido de hidrogênio não se decompõe, porque durante o cozimento as enzimas (substâncias proteicas) são desnaturadas - a estrutura terciária da enzima é perturbada e sua atividade catalítica é perdida.
O peróxido de hidrogênio tóxico (venenoso) é formado em algumas células vegetais e animais como um subproduto metabólico (durante a oxidação biológica). Este composto é tóxico para as células e a peroxidase (ou catalase) contida nos peroxissomos garante sua remoção eficaz. Sob a ação das enzimas catalase (músculo, sangue) ou peroxidase (batata, elódea), o peróxido de hidrogênio se decompõe imediatamente em oxigênio molecular e água, conforme a equação:
Catalase (peroxidase)
2H2O2 = 2H2O + O2
A catalase é uma das enzimas de trabalho mais rápido. A 0 graus C, uma molécula de catalase decompõe até 40.000 moléculas de peróxido de hidrogênio em 1 s. Uma molécula de enzima decompõe até 5 milhões de moléculas de peróxido de hidrogênio em 1 minuto, protegendo a célula do envenenamento. A catalase está localizada em microcorpos e peroxissomos. A peroxidase e a catalase pertencem à classe das oxidoredutases, uma vez que a reação de divisão do peróxido de hidrogênio é redox.
Da mesma forma, se você deixar cair peróxido de hidrogênio em uma folha de elódea, observará uma rápida liberação de bolhas de gás - oxigênio.
A peroxidase mais potente é encontrada na raiz-forte. É obtido especialmente para pesquisas genéticas moleculares.
Conclusões. As células vivas contêm enzimas - substâncias proteicas que aceleram o curso das reações bioquímicas, reduzindo a energia de ativação. Neste experimento é possível determinar a presença da enzima catalase em células animais (ou peroxidase em células vegetais) em produtos crus. Durante a desnaturação térmica ocorre desnaturação irreversível da enzima (destruição de sua estrutura terciária e perda de atividade catalítica). A perda da atividade catalítica da catalase (peroxidase) após a fervura dos produtos confirma a natureza proteica das enzimas.

Estudo de carne de animais doentes e abatidos à força

Sabe-se que carnes e produtos de abate obtidos de animais doentes podem ser fonte de infecção humana por doenças zooantroponóticas e ocorrência de doenças transmitidas por alimentos. Portanto, a principal tarefa de um veterinário é garantir a produção de carnes e produtos cárneos seguros para a vida e a saúde humana.

Os animais saudáveis ​​que tenham sido submetidos a testes de diagnóstico de rotina e provenientes de áreas povoadas livres de doenças infecciosas podem ser abatidos. Os animais encaminhados para abate são submetidos a exame veterinário com termometria aleatória a critério do médico veterinário.

O abate de animais doentes ou com suspeita de doenças contagiosas ou em perigo de morte (ferimentos graves, fraturas, queimaduras e outras lesões) é permitido nos casos previstos nas respectivas instruções, bem como nas Normas para o exame veterinário. dos animais para abate e do exame veterinário e sanitário da carne e dos produtos cárneos (a partir de 1988).

Deve-se lembrar que muitas vezes há casos em que os fornecedores de carne tentam deliberadamente vender carne obtida de cadáveres, doentes e animais mortos em estado de agonia. Portanto, uma das tarefas mais importantes de um veterinário é identificar a carne de animais doentes e cadáveres. Para resolver este problema, é utilizado um conjunto de medidas, que consiste no estudo de documentos de acompanhamento (certificado ou certificado veterinário, etc.), análises organolépticas e laboratoriais.

Objetivo da aula: elaborar métodos de determinação da carne de animais doentes; estabelecer de qual animal foi obtida a carne: são, doente ou cadáver.

Plano de trabalho:

1. Estude os documentos que acompanham a carne.

2. Realizar um exame organoléptico da carne, dos gânglios linfáticos dos órgãos internos e do caldo de carne 1:3.

3. Realizar estudo físico e químico da carne (determinação do pH, reação à peroxidase, teste de formol, reação com sulfato de cobre).

4. Preparar esfregaços de impressões digitais das camadas profundas da carne, gânglios linfáticos e órgãos, corá-los com corantes Gram e Olt e realizar microscopia.

5. Elaborar um protocolo de investigação e, com base nos resultados dos testes organolépticos e laboratoriais e no estudo dos documentos de acompanhamento, fazer uma avaliação veterinária e sanitária da carne.

Materiais: relógio de areia por 2 minutos, frascos resistentes ao calor de 100 ml com tampa e 200 ml (2 unid.), bastões de vidro, pipetas de 2 e 5 ml, bulbo, funis, filtro de algodão, filtro de papel, proveta 100 ml , bureta, suporte, almofariz, pilão, cubeta de esmalte, tesoura, pinça anatômica, bisturi, microscópio, tubos de ensaio (10 unid.), lâminas de vidro, alça bacteriológica, ponte bacteriológica, leite coalhado, queimador de gás (lâmpada de álcool), amostras de carne de 100 g de animais saudáveis, doentes e cadáveres (conjunto para 2-3 pessoas), balança analítica (precisão - 0,01 g), medidor digital de pH, conjunto Michaelis, fogão elétrico, banho-maria, água destilada, solução de sulfato de cobre a 5%, Solução de benzidina a 0,2%, solução de peróxido de hidrogênio a 1%, formalina neutra, 0,1 N. solução de soda cáustica, solução de ácido oxálico 5%, óleo de imersão, fucsina, violeta de genciana, álcool iodado, solução de Lugol, safronina 2%, papel filtro, solução desinfetante de mãos.

Estudo de documentos acompanhantes

Na entrega de animais para abate, o fornecedor deverá apresentar certificado veterinário - Formulário nº 1 ou certificado veterinário - Formulário nº 4 (no caso de transporte dentro da região). No estudo deste documento, atenção especial deve ser dada ao estado epizoótico da localidade de origem dos animais, ao momento e aos resultados dos exames diagnósticos de rotina (para tuberculose, brucelose, etc.) e às vacinações. No envio de animais doentes para abate forçado ou diagnóstico, o diagnóstico deverá ser indicado no documento de acompanhamento.

Amostragem para pesquisa laboratorial

A amostragem para exame físico e químico e microscopia é realizada após exame organoléptico da carcaça e dos órgãos. Três amostras de carne de 200 g cada são retiradas das partes dianteira, média e traseira da carcaça. Para preparar esfregaços, você também pode selecionar gânglios linfáticos e pedaços de órgãos internos (fígado, rim, baço, pulmão).

Estudos organolépticos

Grau de sangramento da carcaça

A carne mal sangrada tem uma cor mais escura. Para determinar o grau de sangramento da carne, eles observam o enchimento dos vasos sanguíneos com sangue, que são especialmente visíveis nas membranas serosas. Além disso, é necessário procurar a presença de sangue na superfície de um corte fresco de carne; para determinar o teor de umidade do corte, use uma tira de papel de filtro;

Existem quatro graus de sangramento da carne: Bom - não há sangue nos vasos sanguíneos, a superfície do corte está seca, é possível uma pequena quantidade de suco de carne.

Satisfatório - uma pequena quantidade de sangue é detectada em pequenos vasos sanguíneos, não há sangue nos músculos, a superfície do corte está úmida.

Ruim - o sangue é detectado em vasos sanguíneos de pequeno e médio porte quando a pressão é aplicada, gotas de sangue são liberadas na superfície do corte;

Muito ruim - o sangue é encontrado em vasos sanguíneos pequenos, médios e grandes, as membranas serosas são de cor vermelho-violeta, o sangue é liberado na superfície do corte.

A carne dos cadáveres tem um grau de sangramento muito baixo, a carne dos animais gravemente doentes mortos em estado agonal tem um grau ruim ou muito ruim.

Definição de hipóstases

Em cadáveres e carcaças mal sangradas, o sangue penetra nas paredes dos vasos sanguíneos e se acumula na parte inferior da carcaça, formando hipóstases - áreas encharcadas de sangue azul-avermelhadas. Como as hipóstases se formam na parte inferior da carcaça, a parte superior da carcaça de um cadáver pode ser sangrada satisfatoriamente. Portanto, não se pode julgar, a partir de uma parte de uma carcaça ou de um pedaço de carne, se toda a carcaça sangrou.

Determinando a localização do corte

O local do abate é verificado se o abate foi realizado de forma aberta. Se o animal estava saudável no momento do abate, o local do abate estará irregular e encharcado de sangue. Isso se deve ao fato de que os músculos não morrem imediatamente após o abate, algumas fibras musculares relaxam enquanto outras se contraem e ocorre sangramento no local da facada. Ao simular o abate de um cadáver, a área de esfaqueamento é lisa e não encharcada de sangue. Portanto, os particulares que fornecem carne ao mercado estão proibidos de limpar o local de abate.

Determinação do estado dos gânglios linfáticos

Nas carcaças e órgãos obtidos de animais saudáveis, os gânglios linfáticos são amarelos ou cinza. Em cadáveres e animais mortos em estado agonal, devido a sangramento insuficiente e hipóxia, os gânglios linfáticos variam de rosa a roxo. Em animais doentes, com o desenvolvimento de processos inflamatórios, os gânglios linfáticos podem estar aumentados, enquanto as bordas da incisão são evertidas, podendo ocorrer hemorragias e outras alterações patológicas na superfície da incisão.

Determinação da gordura de carcaças e órgãos

Na determinação da gordura dos animais, atenção especial é dada à presença de sinais de emagrecimento. Em contraste com a emagrecimento, com a exaustão ocorrem alterações distróficas e degenerativas nos músculos e no tecido adiposo. Em animais emaciados, a consistência da gordura torna-se gelatinosa. É mais conveniente determinar a condição do tecido adiposo entre as vértebras após dividir a carcaça em meias carcaças.

A carne dos animais emaciados é encaminhada para descarte técnico.

Determinação de alterações patológicas em órgãos e tecidos

Pesquisa laboratorial

ao determinar a carne de animais doentes

Na determinação da carne de animais doentes, são realizados os seguintes estudos físico-químicos: determinação do pH da carne, reação à peroxidase (teste da benzidina), determinação dos produtos primários da degradação de proteínas (teste do formol e reação com sulfato de cobre), teste de cozimento. Além disso, também é realizada microscopia de esfregaços de impressões digitais, coloração de Gram e cápsulas de B. anthracis.

Antes de determinar o pH, estabelecer a reação da peroxidase, bem como o teste do formol e a reação com sulfato de cobre, a carne deve ser envelhecida por pelo menos 20-24 horas.

Ao examinar a carne de animais doentes, é realizado um exame microbiológico da carne e dos órgãos internos para identificar o agente causador da doença e a microflora secundária (Salmonella, E. coli, Proteus, etc.).

Microscopia de esfregaços de impressões digitais

Técnica de preparação de esfregaço. Os esfregaços são preparados a partir das camadas superior e profunda de cada amostra. Um pedaço de carne medindo pelo menos 1,5 x 2,0 x 2,5 cm é cortado da amostra inflamada com uma tesoura estéril; as superfícies cortadas são aplicadas em uma lâmina estéril (três impressões em duas lâminas). Os esfregaços são traçados no verso da lâmina de vidro com lápis de cera, depois secos ao ar, fixados sobre a chama de um queimador de gás e corados com Gram e cápsulas de antraz com Olt.

Coloração de Gram. A violeta de genciana carbólica é derramada sobre os esfregaços fixos através de uma tira de papel de filtro, após 2 minutos a tinta é drenada e o esfregaço é lavado com água, após o que a solução de Lugol é despejada por 2 minutos, em seguida, o álcool iodado é derramado por 1 minuto, finalmente o esfregaço é lavado com água e corado com magenta por 2 minutos. O esfregaço é então lavado e seco com papel filtro.

Colorir segundo Olga. Os esfregaços fixos são corados com uma solução de safranina a 2% aquecida recentemente preparada por 1-2 minutos (as bactérias do antraz são pintadas de vermelho tijolo e as cápsulas são amarelas).

O esfregaço é microscópico com alta ampliação microscópica (630-900 vezes) sob imersão. 25 campos de visão são examinados em um slide.

A carne fresca obtida de um animal saudável não deve conter microflora.

Pesquisa físico-química

Teste de culinária

Configurando uma reação. Preparar caldo de carne 1:3. Pesam-se 20-30 g de carne numa balança de laboratório (Fig. 15). Em seguida, uma porção da carne é cortada com tesoura até o estado de carne picada e colocada em um frasco cônico de 100 ml. Usando uma proveta graduada, meça 60-90 ml de água destilada e adicione ao frasco com carne. O frasco é coberto com um vidro de relógio e colocado em banho-maria fervente por 10 minutos.

Contabilizando reações. Para levar em conta a reação, levante o copo e determine o aroma dos vapores do caldo. Depois preste atenção na transparência do caldo: carne de animal são - o caldo fica límpido, o aroma é específico; carne de animal doente ou morto em estado de agonia - nota-se turvação do caldo, enfraquecimento do aroma, possíveis odores estranhos (medicinais, etc.); carne de cadáver - caldo turvo com flocos, cheiro de mofo ou pútrido.

Determinação de produtos primários de degradação de proteínas em carnes

Reação com sulfato de cobre. A essência da técnica é que os produtos da quebra primária de proteínas contidos no filtrado do caldo e no sulfato de cobre formam compostos complexos que precipitam.

Configurando uma reação. Prepare um caldo de carne 1:3; para isso, coloque 20 g de carne picada em um frasco cônico, adicione 60 ml de água destilada e misture bem. Cubra o frasco com uma tampa e aqueça por 10 minutos em banho-maria fervente. Em seguida, o caldo quente é filtrado através de uma densa camada de algodão com pelo menos 0,5 cm de espessura em um tubo de ensaio colocado em um copo de água fria. Se o filtrado contiver flocos, ele é filtrado novamente em papel filtro.

Após a filtração, 2 ml do caldo filtrado são colocados em um tubo de ensaio e adicionadas 3 gotas de uma solução de sulfato de cobre a 5%, agitadas 2 a 3 vezes e deixadas por 5 minutos.

Contabilizando a reação: carne de animal saudável - o caldo permanece claro; carne de um animal morto por eles em estado de agonia

Nota-se turvação no caldo e no caldo de carne congelada

Turbidez intensa com formação de flocos; carne de cadáver - formam-se flocos no caldo, precipitando-se num sedimento gelatinoso.

Teste de Formol (usado apenas para testar carne bovina). A essência da técnica é a precipitação dos produtos da degradação primária das proteínas com formaldeído.

Configurando uma reação. Prepare um extrato 1:1. Para isso, pegue uma amostra de 10 g de tecido muscular sem gordura e tecido conjuntivo e coloque-a em um pilão, onde com uma tesoura é esmagada até o estado de carne picada, depois 10 ml de solução de cloreto de sódio a 0,9% e 10 gotas de 0,1 N são adicionadas lá. Solução de hidróxido de sódio. O conteúdo do almofariz é cuidadosamente triturado com um pilão até obter uma consistência pastosa e transferido para um frasco. O frasco é aquecido em placa elétrica, mexendo com uma vareta de vidro para precipitar as proteínas (até ficarem cinza). O frasco é resfriado com água fria da torneira. O conteúdo do frasco é neutralizado com 5 gotas de solução de ácido oxálico a 5% e filtrado em papel filtro. 2 ml do filtrado de extrato de carne resultante são colocados em um tubo de ensaio e 1 ml de formalina neutra é adicionada.

Contabilizando a reação: carne de animal saudável - o extrato de carne permanece transparente; carne de animal doente ou morto em estado de agonia - o extrato da carne fica turvo e aparece um sedimento escamoso; carne de cadáver - forma-se um coágulo gelatinoso no extrato de carne.

Reação da peroxidase (teste da benzidina)

A peroxidase é uma enzima contida em tecidos animais que destrói compostos peróxidos formados durante o metabolismo. A essência da reação é que a peroxidase decompõe o peróxido de hidrogênio, e o oxigênio atômico resultante oxida rapidamente a benzidina em paraquinodiimida, que com resíduos de benzidina forma um composto azul esverdeado que fica marrom.

Configurando uma reação. Prepare o extrato de carne 1:4. Uma amostra de 10-20 g de carne, picada com tesoura até ficar picada, é colocada em um frasco, 40-80 ml de água destilada são adicionados e extraídos por 15 minutos, mexendo o conteúdo do frasco com uma vareta de vidro ou usando um agitador magnético (Fig. 16), depois filtrado através de um filtro de papel.

Arroz. 16. Agitadores magnéticos

Adicione 2 ml de extrato de carne filtrado em um tubo de ensaio, adicione 5 gotas de uma solução alcoólica de benzidina a 0,2%, agite o conteúdo do tubo de ensaio e adicione duas gotas de uma solução de peróxido de hidrogênio a 1% recém-preparada.

Contabilizando a reação: carne de animal saudável - o extrato adquire uma cor azul esverdeada, passando para marrom-marrom em 1-2 minutos (reação positiva); carne de animal doente ou morto em estado de agonia - o extrato adquire coloração azul esverdeada, passando para marrom-acastanhado em poucos segundos (reação duvidosa); carne de cadáver - o extrato ou não adquire uma cor azul esverdeada específica ou aparece imediatamente uma cor marrom-marrom (reação negativa).

Determinação do pH da carne

O pH da carne é determinado por métodos potenciométricos e colorimétricos.

Método potenciométrico. O pH da carne é determinado por meio de um potenciômetro analógico ou digital (medidor de pH) diretamente na carne com um eletrodo-faca especial (Fig. 17) ou em um extrato aquoso preparado na proporção de 1:10. O extrato é infundido por 15 minutos com agitação periódica e filtrado em papel filtro. A determinação do pH é realizada de acordo com as instruções (ficha técnica) de funcionamento do potenciômetro (medidor de pH). Durante a operação, as leituras corretas do dispositivo devem ser monitoradas periodicamente usando soluções tampão padrão.

Método colorimétrico usando comparador Michaelis.

Configurando uma reação. Preparar um extrato de carne 1:4. Colocar uma amostra de 20 g de carne picada com tesoura para picar em um frasco, adicionar 80 ml de água destilada e mexer vigorosamente por 15 minutos, depois filtrar em papel filtro.

Arroz. 18. Comparador de Michaelis

O pH é determinado por meio de padrões de cores lacrados em tubos de ensaio e um comparador com seis ninhos (Fig. 18), localizados em 2 fileiras de 3 cada. Os tubos de ensaio são inseridos nos encaixes do comparador e preenchidos da seguinte forma: 2 ml de extrato de carne são adicionados aos tubos de ensaio da primeira linha, em seguida, 5 ml de água destilada são adicionados aos tubos externos e 4 ml de água destilada. e 1 ml de indicador (0,1%) são adicionados aos tubos de ensaio centrais. No tubo de ensaio central da segunda fileira são adicionados 7 ml de água destilada e os padrões são inseridos nos ninhos externos, selecionando-os de forma que, quando observados através de furos horizontais, sua cor corresponda à cor do conteúdo do tubo de ensaio do meio. O pH da carne corresponderá ao valor indicado no rótulo padrão.

Levando em consideração a reação: pH da carne de animal saudável - 5,6-6,2; O pH da carne de um animal doente é 6,3; O pH da carne de cadáver muda para o lado alcalino - acima de 6,4 e pode chegar a 7 e superior.

Avaliação veterinária e sanitária de carne de animais doentes e cadáveres

A carne é considerada obtida de animal saudável se houver boas características organolépticas da carcaça, ausência de micróbios patogênicos nos esfregaços, valor de pH na faixa de 5,6-6,2, reação positiva à peroxidase e indicadores negativos de formol teste e reação com sulfato de cobre.

A carne de animais doentes e sobrecarregados apresenta sangramento insuficiente, pH na faixa de 6,3-6,5, reação questionável à peroxidase e, ao realizar teste de formol e reação com sulfato de cobre, formam-se flocos no extrato.

A carne de animais mortos em estado de agonia apresenta sangramento fraco, coloração lilás-rosa ou azulada dos gânglios linfáticos, pH 6,6 ou superior, reação negativa à peroxidase, e o teste de formol e a reação com sulfato de cobre são acompanhados pela formação de um coágulo gelatinoso.

A carne e os produtos de abate obtidos de cadáveres e animais mortos em estado de agonia são encaminhados para eliminação técnica.

A questão da utilização de carne e produtos de abate obtidos de animais doentes é decidida após o estabelecimento de um diagnóstico de acordo com as Normas para inspeção pré-abate e exame veterinário post mortem de carnes e produtos cárneos (de 1988) e demais documentos normativos vigentes.

A carne de animais saudáveis ​​é utilizada sem restrições.

-leucemia mielóide aguda

- Leucemia linfocítica crônica

+ leucemia indiferenciada

- leucemia linfocítica aguda

-leucemia mielóide crônica

/\173. Na patogênese dos distúrbios do mecanismo de coagulação da hemostasia, é importante

-diminuição da contagem de plaquetas

- disfunção plaquetária

-vasopatia

+ deficiência de fator VIII

-defeito dos receptores plaquetários IIb-IIIa

/\174. A trombocitopenia é caracterizada por

- deficiência de fatores de coagulação plasmática

-extensão do tempo de coagulação do sangue

- tipo de sangramento hematoma

+ tipo de sangramento petequial

- o tempo de sangramento é normal

/\175. A adesão e agregação plaquetária diminuem com

-excesso de cálcio e magnésio

- deficiência de coagulação sanguínea VIII f

-aumento da concentração sanguínea de ADP

-excesso de tromboxano A2

+ Deficiência do fator von Willebrand

/\176. A deficiência hereditária de pró-coagulantes ocorre quando

+ hemofilia

-deficiência de vitamina K

-insuficiência hepática

-formação de anticorpos contra pró-coagulantes

- carboxilação prejudicada de fatores do complexo de protrombina

/\177. A hemofilia A é caracterizada por

-tipo de herança autossômica recessiva

-deficiência de coagulação sanguínea IX

- petéquias, equimoses

+hemartrose

-extensão do tempo de sangramento

/\178. A doença de von Willebrand é caracterizada por

-redução da duração do sangramento capilar

-encurtando o tempo de coagulação do sangue

-aumento da capacidade de agregação plaquetária

-síntese prejudicada do fator VIII

+diminuição da atividade pró-coagulante do fator VIII

/\179. Na patogênese da hipercoagulação na síndrome DIC, é importante.

+ ativação de mecanismos de coagulação sanguínea “externos” e “internos”

-hipofibrinogenemia

-ativação do sistema fibrinolítico do sangue

-excesso de antitrombina III

-trombocitopatia

/\180. Na patogênese da hipocoagulação na síndrome DIC é importante

+ consumo de coagulopatia e trombocitopenia

-excesso de pró-coagulantes

- entrada no sangue de uma grande quantidade de tromboplastina tecidual

-ativação de inibidores da fibrinólise

- deficiência de antitrombina III

/\181. O estágio mais grave da síndrome DIC em recém-nascidos

+hipocoagulação

-hipercoagulação

-transitório

-recuperação

-terminal

/\181. As manifestações clínicas da doença hemorrágica do recém-nascido incluem

+melena, sangrando pela ferida umbilical

- amarelecimento da pele e membranas mucosas

-kernicterus

-hiperbilirrubinemia

-edema

/\182. Na hemofilia A,

+Formação de protrombinase ativa

-Transição de protrombina para trombina

-Transição de fibrinogênio em fibrina

-Segunda fase da coagulação sanguínea

-Terceira fase da coagulação sanguínea

/\183. A hipercoagulação do sangue ocorre quando

-Excesso de proteína C

-Excesso de proteína S

-Excesso de antitrombina-III

+Resistência do Fator V à proteína C

-afibrinogenemia

/\184. Fatores etiológicos de origem exógena que causam danos ao sistema nervoso

+intoxicação alcoólica

-danos aos neurônios no coma hepático

- isquemia cerebral

-hipoglicemia

-danos aos neurônios devido à uremia

/\185. Através de condutores nervosos eles entram no sistema nervoso

-exotoxina estreptocócica

-meningococos

-pneumococos

-Escherichia coli

+ vírus da raiva

/\186. Causa da encefalopatia esponjosa transmissível

-Citomegalovírus

-Enterovírus

-Vírus da raiva

-Vírus do herpes

+Príons

/\187. Vírus que formam inclusões intracelulares em neurônios

-Citomegalovírus

-Enterovírus

+Vírus da raiva

-Vírus do herpes

-Vírus da polimielite

/\188. A deficiência de frenagem é

+ liberação das partes subjacentes do sistema nervoso central do controle das partes sobrejacentes

-redução das influências neurais nas estruturas pós-sinápticas

/\189. A síndrome de denervação é

- transporte prejudicado de trofógenos e formação de patotrofógenos

-diminuição dos impulsos aferentes para o neurônio

- liberação das partes subjacentes do sistema nervoso central do controle das partes sobrejacentes

+redução das influências neurais nas estruturas pós-sinápticas

-um grupo de neurônios hiperativos

/\190. O déficit de inibição primária se desenvolve devido a

-estimulação excessiva do sistema nervoso

+ distúrbios da estrutura e função dos neurônios inibitórios

-aumentar a síntese de mediadores excitatórios

/\191. O déficit de inibição secundária se desenvolve devido a

+ ações de agentes despolarizantes de aminoácidos excitatórios levando a atividade neuronal excessiva

-distúrbios da estrutura e função dos neurônios inibitórios

- distúrbios na estrutura e função das sinapses excitatórias

-diminuição da síntese de mediadores excitatórios

-excesso de influências inibitórias descendentes durante a destruição de partes do sistema nervoso

/\192. A consequência da síndrome de desinibição pode ser

-desenvolvimento de alterações distróficas em neurônios e estruturas inervadas

+ formação de GPUS (gerador de excitação patologicamente aumentada)

-desenvolvimento da síndrome de desnervação

-desenvolvimento de atrofia de órgãos

-desenvolvimento da síndrome de desaferentação

/\193. O gerador de excitação patologicamente aprimorado (PAG) é

+ um agregado de neurônios interagindo hiperativos produzindo um fluxo descontrolado de impulsos

- um conjunto de processos membranares e intracelulares em cascata

- um complexo de mudanças nas estruturas sinápticas

- distúrbio trófico causado por perda ou alteração nas influências nervosas

Um complexo de mudanças que ocorrem em neurônios, órgãos e tecidos pós-sinápticos após a perda das influências nervosas sobre essas estruturas

/\194. A importância da educação GPUV

-promove a formação de inibição difusa

+ é um determinante do sistema patológico e contribui para a formação do sistema patológico

-promove a formação do sistema fisiológico

-aumenta a influência trófica do neurônio nas estruturas inervadas

-inibe o desenvolvimento de processos neuropatológicos

/\195. A hipercinesia lenta inclui

-convulsões

+atetose

-tiques

-coréia

-tremor

/\196. Neuroses podem levar ao desenvolvimento

+ úlcera duodenal

-meningite

- encefalopatia esponjosa transmissível

-encefalite

-Doença de Alzheimer

/\197. A paralisia central é caracterizada por:

-preservação dos movimentos voluntários

-enfraquecimento dos reflexos tendinosos

+reflexos tendinosos aumentados

-ausência de reflexos patológicos

-diminuição do tônus ​​muscular

/\198. A paralisia periférica é caracterizada por

-aumento dos reflexos espinhais

-o aparecimento de reflexos patológicos

- hipertrofia muscular

+ hipotonia muscular

- hipertonicidade muscular

/\203. Os mediadores da dor incluem

-concentrações fisiológicas de adrenalina

-encefalinas

-endorfina

+ bradicinina

-dinorfina

/\204.

-nociceptores

-troncos nervosos

-medula espinhal

-formação reticular

+ neurônios do tálamo e córtex cerebral

/\205. Mais suscetível à dor

+ pele e mucosas

-fígado

-cérebro

-medula espinhal

-miocárdio

/\206. Dor fantasma é dor

-no braço esquerdo e na omoplata esquerda durante um ataque de angina de peito

-acima da clavícula na hepatite aguda ou irritação do peritônio parietal

- para doenças cerebrais

+ numa parte faltante do corpo, mais frequentemente após amputação de membros

- dor na cintura com pancreatite

/\207. Na patogênese da dor fantasma eles são importantes.

-aumento da sensibilidade dos nociceptores

-aumento da condutividade dos troncos nervosos

-aumento da excitabilidade do córtex cerebral

Formação de neuroma de amputação e formação de um gerador de excitação patologicamente aumentada na medula espinhal

-inibição da excitabilidade do tronco cerebral

/\208.O sistema antinociceptivo inclui

-bradicinina

+substância gelatinosa

-íons H, K

-histamina

-substância P

/\209.A redução da sensibilidade à dor ao esfregar a pele e massagear é devida a

-diminuição da sensibilidade dos nociceptores

- bloqueio de condutores nervosos

-diminuição da excitabilidade dos neurônios da formação reticular

-inibição da excitabilidade dos neurônios talâmicos

+ ativação da substância gelatinosa da medula espinhal

/\211. O principal elo na patogênese do coma hiperosmolal diabético é

+hiperglicemia

-cetose

- acidemia láctica

-hipóxia

-hiperazotemia

/\212. O AVC isquêmico pode ser causado por

+trombose ou embolia de vasos cerebrais

- ruptura de um aneurisma cerebral

- distonia vascular cerebral

- hiperemia arterial do cérebro

-redução da coagulação sanguínea

/\213. A causa do acidente vascular cerebral hemorrágico pode ser

+ hipertensão arterial

-aterosclerose estenótica dos vasos cerebrais

-trombose e embolia de vasos cerebrais

-angiospasmo dos vasos cerebrais

-aumento do hematócrito

/\214. No acidente vascular cerebral isquêmico, em contraste com o acidente vascular cerebral hemorrágico, o quadro clínico é frequentemente dominado por

-Edema Cerebral

+Sintomas focais

-Sangue no líquido cefalorraquidiano

-Compressão do tecido cerebral

-Aumento da pressão intracraniana

/\215. Ataxia cerebelar, comprometimento da memória para eventos atuais, nistagmo, disartria, disfagia, soluços, tontura são característicos do dano

+ Artéria vertebral (artéria cerebelar inferior posterior)

-Artéria cerebral anterior

-Artéria cerebral média

-Artérias cerebrais posteriores

-Artérias Piais

/\216. Paresia ou paralisia espástica dos membros (braço proximal e perna distal), perda de sensibilidade no lado oposto à lesão é observada quando danificada

-Artéria vertebral (artéria cerebelar inferior posterior)

+Artéria cerebral anterior

-Artéria cerebral média

-Artéria cerebral posterior

-Artérias Piais

/\217. O paciente M., 64 anos, com diagnóstico de acidente vascular cerebral isquêmico, foi diagnosticado com reflexo de Babinski positivo à esquerda, perda de sensibilidade no lado esquerdo do corpo.