動物の肉中のペルオキシダーゼに対する反応。 ペルオキシダーゼ反応は陽性です
濾液２ml、ベンジジンの０．２％アルコール溶液５滴、および過酸化水素の１％溶液２滴を試験管に注ぐ。
健康な動物の新鮮な肉からの抽出物は緑青色になり、数分後に茶色に変わります。 病気の人、過労死した動物、苦しみながら殺された動物の肉から抽出したものでは、色は変化しませんが、時には緑がかった青の色が現れ、時間が経ってすぐに茶色に変わります。
ペルオキシダーゼとの反応は、抽出物を調製せずに実行できます。1% 過酸化水素溶液 2 滴と 0.2% ベンジジン溶液 5 滴を新鮮な肉に塗布します。 青緑色のスポットの出現とそれに続く茶色への変化は陽性反応とみなされ、色のスポットが存在しない場合は陰性反応とみなされます。
ホルモル反応
長時間の苦痛や重篤な病状の後に殺された動物の肉は、ホルモール反応によって認識できます。
肉サンプルには脂肪と結合組織が含まれていません。 サンプル 10 g を乳鉢に入れ、ハサミでよく砕き、10 ml の生理食塩水を加えます。 溶液と10滴の0.1N水酸化ナトリウム。 肉は乳棒で挽かれます。 得られたスラリーをガラス棒でフラスコに移し、沸騰するまで加熱してタンパク質を沈殿させます。 フラスコを水道水で冷却し、その後５％シュウ酸溶液を５滴加えて内容物を中和し、濾紙を通して試験管に移す。 濁った抽出物は再度濾過されるか、遠心分離されます。
反応の進行状況。 抽出液 2 ml を試験管に注ぎ、中性ホルマリン 1 ml を加えます。
苦しみながら殺された動物、重病の動物、または死後解体された動物の肉から抽出された抽出物は、濃厚な血塊に変わります。 病気の動物の肉からの抽出物ではフレークが落ちますが、健康な動物の肉からの抽出物は液体で透明のままであり、時にはわずかに濁りが現れることがあります。
ホルマリンは、最初に、ニュートラルロットとメチレンブルーの 0.2% 水溶液の等量混合物からなる指示薬を使用して、色が紫から緑色に変わるまで 0.1 N 水酸化ナトリウムで中和されます。
食肉の衛生評価
それは研究結果に基づいて実行され、ワークブックに入力されます。
動物が苦しみながら殺されたことを示す兆候（停滞、出血不良、刺された部位の反応の欠如）が検出された場合、死骸と臓器は技術的処分の対象となります。
健康な動物の肉には病原性微生物は存在せず、pH は 5.7 ～ 6.2 の範囲にあり、ペルオキシダーゼに対する反応は陽性です。
pH 6.3 以上でペルオキシダーゼに対する陰性反応を示す肉は、病気の動物または強制的に殺された動物由来であることが疑わしいと考えられます。
肉の種類
ある種類の動物の肉を、通常はより価値のある別の種類の動物の肉として偽装する試みは種偽装と呼ばれ、小売チェーンやケータリング施設の市場で行われる可能性があります。 したがって、獣医師は肉の種類を判断できなければなりません。 通常、種の偽装には、サイズ、形状、その他の特徴が類似した動物の死骸が使用されます。 そのため彼らは通常、馬肉を牛肉として偽装しようとしたり、その逆（馬肉の価値が高い国もある）、大型犬の死骸を子羊として偽装したり、猫をウサギやヌートリアとして偽装しようとしたりする。 肉の種類を決定するには、客観的および主観的な方法が使用されます。
肉の種類を決定するための主観的な方法。 主観的な方法には、肉の形状、形態学的、官能的特徴などが含まれます。
官能インジケーター
肉の色による判断
肉の色や筋肉組織の構造は、動物の年齢、性別、肥満などの理由によって異なります。
牛の肉は淡い赤色から濃い赤色まであり、断面は粗めです。
濃い赤の馬肉
調理後、豚や子牛の肉は白または明るい灰色になり、牛、羊、馬の肉は濃い灰色になります。
官能的な方法には、外観と色を決定することが含まれます。 切り口の筋肉の状態。 一貫性; 匂い; 出汁の透明感と香り。
選択された各画像は個別に分析されます。
設備と材料
- · GOST 24104--2001 4 に準拠した汎用実験用秤で、最大計量限界は 200 g、許容誤差は 20 mg です。
- · GOST 21240--89に準拠した医療用メス。
- · GOST 21241--89に準拠した医療用ピンセット。
- · GOST 4025--95 に準拠した家庭用肉挽き機、または GOST 20469--95 に準拠した家庭用電気肉挽き機。 GOST 25336--82に準拠した三角フラスコKn-100。
- 電気温水器
- · GOST 21239--93に準拠した医療用ハサミ。
- ・ナイフ。
- · GOST 25336--82 に準拠したファンネル、タイプ VF
- · GOST 1770--74 に準拠した測定シリンダー。 容量は25、100cm 3です。
- · GOST 25336--82、タイプ B または N に準拠したガラス、容量 50 cm-"。
- ・ 時計皿。
- ・ガラス棒。
- · GOST 12026--76 に準拠した濾紙。
- · GOST 11109-90に準拠した家庭用ガーゼ。
- · GOST 6709--72 に準拠した蒸留水。
屠体の外観と表面、外皮および内部脂肪組織、腹部漿液膜の判定は、外部検査によって行われます。
切り口の筋肉の状態を判断する
大腿部の筋肉は筋繊維を横切って切断されます。 筋肉の属性を決定するために、濾紙を筋肉の切断面に 2 秒間適用します。
筋肉の粘着性を判断するには、指で筋肉部分の表面に触れます。 筋肉の色は、拡散日光の下で視覚的に判断されます。
整合性の判定
大腿筋の領域のウサギの死骸の表面に肺の穴が形成され、その水平化の時間が監視されます。
臭気検知
テストの準備
脂肪の匂いを測定するために、各サンプルから少なくとも 20 g の内部脂肪組織を採取し、各サンプルをハサミで粉砕し、ビーカー内で水浴中で溶かし、20 ℃の温度まで冷却します。 1 と。
GOST R 53228--2 (GOST 20235.0-74 S. 3) はロシア連邦の領土で発効しています
テストの実施
内部脂肪の匂いは、清潔なガラス棒で撹拌することによって官能的に判断されます。
屠体の表面と腹腔の匂いは官能的に判断されます。
深層の匂いを確認するには、清潔なナイフでマウスに切り込みを入れます。 骨に隣接する筋肉組織の層の匂いに特に注意が払われます。
スープの透明度と香りの決定
分析の準備
各サンプル（枝肉）から、太もも、肩甲骨、背中、尻の領域からメスでそれぞれ25 gの筋肉片を切り出し、肉挽き器で2回切り刻みます。
ひき肉をよく混ぜて計量します。
ミートブロスを調製するには、ひき肉 20 g を実験用秤で量り、容量 100 cm3 の三角フラスコに入れ、蒸留炉床 60 cm3 を注ぎます。 フラスコの内容物は完全に混合されます。 フラスコを時計皿で覆い、沸騰水浴中に１０分間置く。
分析の実施
肉汁の匂いは、80℃～85℃に加熱する過程で、少し開いたフラスコから蒸気が出てくる瞬間を感じて判断します。 ブロスの透明度は、容量 25 cm 3 、直径 20 mm のメスシリンダーにブロス 20 cm 3 を注いで視覚的に測定します。
官能法
ウサギ肉（国産）2kgは良好で、傷は見られず、異臭もなく、血栓、胆汁汚れもありません。 匂いはこの種の肉の特徴であり、色は白ピンクです。 スープは透明で、特有の臭みがなく、肉が新鮮であることがわかりました。
ペルオキシダーゼ反応
この反応の本質は、ペルオキシダーゼ酵素の存在下で過酸化水素がベンジジンを酸化してパラキノンジイミドを形成し、酸化が不十分なベンジジンにより青緑色の化合物が生成され、これが茶色に変化するということです（呈色反応）。 ペルオキシダーゼの活性は、他の酵素と同様、環境の pH に依存します。 抽出濾液（１：４）２ｍｌを試験管に注ぎ、ベンジジンの０．２％アルコール溶液を５滴加え、内容物を振盪した後、１％過酸化水素水を２滴加える。 反応は 1 ～ 2 分以内に読み取られます。
抽出物は最初に青緑色になり、その後 1 ～ 2 分以内に茶色がかった茶色に変わりました。この分析は、肉が新鮮であることを示しています。
過酸化水素とジャガイモまたは肉との相互作用を示す写真または絵を見つけるのを手伝ってください。 そして最良の答えを得ました
Elena Kazakova[guru]さんからの回答
実験を使用して、ジャガイモ塊茎中の酵素の存在を確認し、
過酸化水素を分解する
装置、試薬。 試験管、1 ml のマークが付いたピペットを備えた実験用スタンド。 生のジャガイモと茹でたジャガイモ（または生の肉と調理した肉）。 過酸化水素（3％溶液または0.5％溶液）; 破片; 一致します。
進捗。 生のジャガイモのスライスを 1 つの試験管に入れ、茹でたジャガイモのスライスを別の試験管に入れます (生のスライスと茹でた肉のスライスをそれぞれ 3 番目と 4 番目の試験管に入れることができます)。 ピペットを使用して、0.5 ml の 3% 過酸化水素 (H2O2) 溶液を各試験管に注ぎます。
泡が出てきたら、くすぶっている破片をこれらの試験管のそれぞれに入れます。
観察。
生のジャガイモ (または肉) が入った試験管では、急速な泡の形成 (「沸騰」) が観察されます。 試験管の中に入れられたくすぶっている破片が爆発的に燃え上がります。
茹でたジャガイモや茹でた肉を入れた試験管では、過酸化水素は分解せず、泡も発生しません。
結果についての議論。 生のジャガイモや肉を入れた試験管内で気泡が発生するのは、植物ではペルオキシダーゼ（筋肉ではカタラーゼ）という酵素が細胞内に存在し、過酸化水素を水と酸素に分解することで説明されます。 分子状酸素は泡の形で放出されます。 酸素の存在は、くすぶっている破片を使って判断できます。破片を試験管に入れると泡を出しながら燃え上がります。
茹でたジャガイモや茹でた肉が入った試験管では、調理中に酵素（タンパク質物質）が変性し、酵素の三次構造が破壊され、その触媒活性が失われるため、過酸化水素は分解されません。
有毒な（有毒な）過酸化水素は、（生物学的酸化中に）代謝副産物として一部の植物および動物の細胞内で形成されます。 この化合物は細胞に対して有毒であり、ペルオキシソームに含まれるペルオキシダーゼ (またはカタラーゼ) が効果的に除去します。 酵素カタラーゼ (筋肉、血液) またはペルオキシダーゼ (ジャガイモ、エロデア) の作用下で、過酸化水素は次の方程式に従って直ちに酸素分子と水に分解されます。
カタラーゼ（ペルオキシダーゼ）
2H2O2 = 2H2O + O2
カタラーゼは最も速く作用する酵素の 1 つです。 0℃では、1分子のカタラーゼが1秒間に最大40,000分子の過酸化水素を分解します。 1 つの酵素分子は 1 分間に最大 500 万分子の過酸化水素を分解し、細胞を中毒から保護します。 カタラーゼは微生物およびペルオキシソームに局在しています。 過酸化水素の分解反応は酸化還元であるため、ペルオキシダーゼとカタラーゼは酸化還元酵素のクラスに属します。
同様に、過酸化水素をエロデアの葉に滴下すると、酸素の気泡が急速に放出されるのが観察されます。
最も強力なペルオキシダーゼは西洋わさびに含まれています。 それは分子遺伝学的研究のために特別に得られます。
結論。 生きた細胞には、活性化エネルギーを減少させることによって生化学反応の過程を加速するタンパク質物質である酵素が含まれています。 この実験では、生製品中の動物細胞の酵素カタラーゼ (または植物細胞のペルオキシダーゼ) の存在を確認することができます。 熱変性中に、酵素の不可逆的な変性が発生します（三次構造の破壊と触媒活性の喪失）。 製品を煮沸した後のカタラーゼ（ペルオキシダーゼ）の触媒活性の喪失は、酵素のタンパク質の性質を裏付けます。
病気の動物や強制的に屠殺された動物の肉の研究
病気の動物から得られる肉や屠殺製品は、人獣共通感染症や食中毒の発生源となる可能性があることが知られています。 したがって、獣医師の主な任務は、人間の生命と健康にとって安全な肉および肉製品の生産を確保することです。
定期的な診断検査を受け、感染症のない人口密集地域からの健康な動物は屠殺が許可されます。 屠殺のために送られた動物は、獣医師の裁量により、ランダムな体温測定による獣医師検査の対象となります。
病気の動物、伝染病の疑いがある動物、または死の危険（重傷、骨折、火傷、その他の傷害）がある動物の屠殺は、関連する指示および獣医師検査規則に規定されている場合に許可されます。動物の屠殺と肉および肉製品の獣医学的および衛生的検査（1988年から）。
食肉業者が故意に死体、病人、苦しみながら殺された動物から得た肉を販売しようとするケースがよくあることを忘れてはなりません。 したがって、獣医師の最も重要な仕事の 1 つは、病気の動物の肉や死体を特定することです。 この問題を解決するために、添付文書（獣医師の証明書や証明書など）の調査、感覚刺激および臨床検査からなる一連の対策が使用されます。
レッスンの目的: 病気の動物の肉を特定する方法を見つけること。 その肉がどの動物から得られたものであるかを明らかにする：健康な動物、病気の動物、または死体。
作業計画：
1. 肉に関する添付文書を調べます。
2. 肉、内臓のリンパ節、肉汁 1:3 の官能検査を実施します。
3. 肉の物理的および化学的研究を実施します (pH の測定、ペルオキシダーゼに対する反応、ホルモール試験、硫酸銅との反応)。
4. 肉、リンパ節、臓器の深層から指紋塗抹標本を作成し、グラム染色とオルト染色で染色し、顕微鏡検査を行います。
5. 研究計画書を作成し、官能検査および臨床検査の結果と添付文書の研究に基づいて、肉の獣医学的および衛生的評価を行います。
材料：2分砂時計、蓋付き耐熱フラスコ100ml、200ml（2本）、ガラス棒、ピペット2、5ml、バルブ、ロート、綿フィルター、ペーパーフィルター、メスシリンダー100ml 、ビュレット、スタンド、乳鉢、乳棒、エナメルキュベット、ハサミ、解剖用ピンセット、メス、顕微鏡、試験管（10本）、スライドガラス、細菌学的ループ、細菌学的ブリッジ、サワーミルク、ガスバーナー（アルコールランプ）、肉サンプル健康な動物、病気の動物および死体から 100 g を採取（2 ～ 3 人用にセット）、分析秤（精度 - 0.01 g）、デジタル pH メーター、ミカエリスセット、電気ストーブ、ウォーターバス、蒸留水、5% 硫酸銅溶液、 0.2%ベンジジン溶液、1%過酸化水素水、中性ホルマリン、0.1N。 苛性ソーダ溶液、5%シュウ酸溶液、浸漬油、フクシン、ゲンチアナバイオレット、ヨウ素添加アルコール、ルゴール液、2%サフロニン、濾紙、手指消毒液。
添付文書の検討
屠殺用に動物を配送する場合、サプライヤーは獣医師証明書 - フォーム No. 1 または獣医師証明書 - フォーム No. 4 (地域内で輸送する場合) を提示する必要があります。 この文書を研究する際には、動物が来た地域の動物流行の状態、定期的な診断検査（結核、ブルセラ症など）およびワクチン接種のタイミングと結果に特別な注意を払う必要があります。 病気の動物を強制的または診断的屠殺のために送るときは、添付文書に診断を示す必要があります。
実験室研究のためのサンプリング
物理的および化学的検査および顕微鏡検査のためのサンプリングは、死体および臓器の官能検査後に行われます。 屠体の前部、中央部、後部からそれぞれ 200 g の肉サンプルを 3 つ採取します。 塗抹標本を作成するために、さらにリンパ節や内臓の一部 (肝臓、腎臓、脾臓、肺) を選択することもできます。
官能研究
枝肉の出血の程度
血が通っていない肉は色が暗くなります。 肉の出血の程度を判断するために、彼らは血管の血液の充満を調べます。特に漿膜上ではっきりと見えます。 さらに、切り口の水分含有量を判断するには、濾紙を使用して、新鮮な肉の表面に血液が存在するかどうかを確認する必要があります。
肉の出血には 4 つの段階があります。良好 - 血管内に血液がなく、切断面が乾燥しており、少量の肉汁が存在する可能性があります。
満足 - 小さな血管に少量の血液が検出され、筋肉には血液がなく、切断面は湿っています。
悪い - 中小規模の血管で血液が検出され、圧力がかかると切断面に血液の滴が放出されます。
非常に悪い - 小、中、大の血管に血液が見られ、漿膜の色は紫がかった赤色で、切断面に血液が放出されます。
死体の肉は出血の程度が非常に悪く、苦しみながら殺された重篤な動物の肉は出血の程度が悪い、または非常に悪いです。
低静止状態の定義
死体や出血の少ない死体では、血液が血管の壁を通って浸透し、死体の下部に集まり、低血圧、つまり青赤の血液に浸した領域が形成されます。 死骸の下部には血小板が形成されているので、死体の上部からの出血を良好に行うことができる。 したがって、死骸の一部や肉片からは、死骸全体が出血しているかどうかを判断することはできません。
カット位置の決定
屠殺が公然と行われたかどうか、屠殺場所が検査される。 屠殺時に動物が健康であった場合、屠殺現場はでこぼこになり、血が染み込んでいます。 これは、屠殺後すぐに筋肉が死滅するわけではなく、一部の筋線維が弛緩する一方で他の筋線維が収縮し、刺した部位から出血が起こるという事実によるものです。 死体の屠殺をシミュレートする場合、刺した部分は滑らかで、血に染まりません。 したがって、市場に肉を供給する個人が屠殺現場を清掃することは禁止されている。
リンパ節の状態の判定
健康な動物から得られた死体や臓器では、リンパ節は黄色または灰色です。 出血量が少なく低酸素状態のため、苦しみながら殺された死体や動物のリンパ節はピンク色から紫色になります。 病気の動物では、炎症過程の進行に伴い、リンパ節が拡大する一方で、切開の端が裏返しになり、切開の表面に出血やその他の病理学的変化が生じることがあります。
屠体および臓器の脂肪度の測定
動物の肥満を判断するときは、衰弱の兆候の存在に特別な注意が払われます。 衰弱とは対照的に、疲労によりジストロフィー性および変性変化が筋肉および脂肪組織に発生します。 衰弱した動物では、脂肪の粘稠度がゼラチン状になります。 枝肉を半分に分けた後、椎骨間の脂肪組織の状態を判断するのが最も便利です。
衰弱した動物の肉は技術的処理に送られます。
臓器や組織の病理学的変化の判定
実験室での研究
病気の動物の肉を判断するとき
病気の動物の肉を測定する場合、次の物理化学的研究が実行されます：肉のpHの測定、ペルオキシダーゼに対する反応（ベンジジン試験）、一次タンパク質分解生成物の測定（ホルモール試験および硫酸銅との反応）、調理試験。 さらに、グラム染色された指紋汚れや炭疽菌の莢膜の顕微鏡検査も行われます。
pH の測定、ペルオキシダーゼ反応の設定、ホルモール テストおよび硫酸銅との反応の前に、肉を少なくとも 20 ～ 24 時間熟成させる必要があります。
病気の動物の肉を検査する場合、病気の原因物質と二次微生物叢（サルモネラ菌、大腸菌、プロテウスなど）を特定するために、肉と内臓の微生物学的検査が行われます。
指紋汚れの顕微鏡検査
スミアインプリントを作成するための技術。 塗抹標本は各サンプルの上層と深層から調製されます。 滅菌ハサミを使用して、少なくとも 1.5 x 2.0 x 2.5 cm の肉片を火にかけたサンプルから切り出し、その切断面を滅菌スライドに貼り付けます (2 枚のスライドに 3 つのプリント)。 スライドガラスの裏側にワックスペンシルでスミアをなぞり、空気中で乾燥させ、ガスバーナーの炎の上で固定し、グラムおよび炭疽菌のカプセルをオルトで染色します。
グラム染色。 カルボリックリンドウバイオレットを濾紙のストリップを通して固定スミア上に注ぎ、2分後ペイントを排出し、スミアを水で洗浄し、その後ルゴール溶液を2分間注ぎ、次にヨウ素化アルコールを1分間注ぎます。最後にスミアを水で洗浄し、マゼンタで 2 分間染色します。 次に塗抹標本を洗浄し、濾紙で乾燥させます。
オルガさんによるカラーリング。 固定した塗抹標本を、新たに調製した加熱２％サフラニン溶液で１〜２分間染色する（炭疽菌はレンガ色に赤く塗られ、莢膜は黄色である）。
塗抹標本は浸漬下で高倍率（630～900倍）で顕微鏡観察されます。 1 枚のスライドで 25 の視野が検査されます。
健康な動物から得た新鮮な肉には微生物叢が含まれていてはなりません。
物理化学的研究
調理試験
反応を設定します。 肉スープを 1:3 で準備します。20 ～ 30 g の肉を実験用秤で量ります (図 15)。 次に、肉の一部をハサミでひき肉の状態に切り、100mlの三角フラスコに入れます。 メスシリンダーを使用して、60〜90 mlの蒸留水を測定し、肉の入ったフラスコに加えます。 フラスコを時計皿で覆い、沸騰水浴中に１０分間置く。
反応を考慮する。 反応を考慮するには、グラスを持ち上げて、スープの蒸気の香りを確認します。 この後、スープの透明度に注意してください。健康な動物の肉です。スープは透明のままで、香りは独特です。 病気または苦しみの状態で殺された動物の肉 - スープの濁りが認められ、香りが弱まり、異臭がする可能性があります（薬など）。 死体の肉 - フレーク、かび臭い、または腐った臭いを伴う濁ったスープ。
肉中の一次タンパク質分解生成物の測定
硫酸銅との反応。 この技術の本質は、ブロス濾液に含まれる一次タンパク質分解生成物と硫酸銅が複雑な化合物を形成し、沈殿することです。
反応を設定します。 1:3 のミートブロスを準備します。これを行うには、三角フラスコにひき肉 20 g を入れ、蒸留水 60 ml を加えてよく混ぜます。 フラスコに蓋をし、沸騰水浴中で 10 分間加熱します。 次に、熱いブロスを少なくとも0.5cmの厚さの脱脂綿の緻密な層を通して濾過し、冷水の入ったグラスに入れた試験管に入れます。 濾液にフレークが含まれている場合は、再度ペーパーフィルターで濾過します。
濾過後、濾過したブロス２mlを試験管に注ぎ、５％硫酸銅溶液を３滴加え、２〜３回振盪し、５分間放置する。
反応を考慮すると、健康な動物の肉 - スープは透明のままです。 苦悶の状態で彼らに殺された動物の肉
スープの白濁が顕著であり、冷凍肉からのスープでは
フレークの形成を伴う強い濁り。 死体肉 - ブロス中でフレークが形成され、ゼリー状の沈殿物として沈殿します。
ホルモール検査（牛肉を検査する場合にのみ使用されます）。 この技術の本質は、ホルムアルデヒドによる一次タンパク質分解生成物の沈殿です。
反応を設定します。 1:1 抽出物を準備します。 これを行うには、脂肪と結合組織を除いた筋肉組織のサンプル10gを採取し、乳鉢に置き、ハサミを使用してひき肉の状態に粉砕し、次に0.9％塩化ナトリウム溶液10mlと10mlを加えます。そこに0.1Nの滴を加えます。 水酸化ナトリウム溶液。 乳鉢の内容物を乳棒でペースト状になるまで徹底的に粉砕し、フラスコに移します。 フラスコを電気ホットプレート上で加熱し、ガラス棒で撹拌してタンパク質を沈殿させます（灰色になるまで）。 フラスコを冷たい水道水で冷却する。 フラスコの内容物を５％シュウ酸溶液５滴で中和し、濾紙で濾過する。 得られた肉エキス濾液２mlを試験管に取り、中性ホルマリン１mlを加える。
反応を考慮すると、健康な動物の肉 - 肉抽出物は透明のままです。 病気になったり、苦しみながら殺された動物の肉 - 肉抽出物が濁り、薄片状の沈殿物が現れます。 死体肉 - 肉抽出物中にゼリー状の凝固物が形成されます。
ペルオキシダーゼ反応（ベンジジンテスト）
ペルオキシダーゼは動物組織に含まれる酵素で、代謝中に形成される過酸化物化合物を破壊します。 この反応の本質は、ペルオキシダーゼが過酸化水素を分解し、生じた原子状酸素がベンジジンを急速に酸化してパラキノジイミドにし、ベンジジン残基とともに青緑色の化合物が形成され、茶色に変化します。
反応を設定します。 肉エキスを1：4で用意します。 ハサミでミンチ状に切った肉サンプル 10 ～ 20 g をフラスコに入れ、蒸留水 40 ～ 80 ml を加え、ガラス棒またはフラスコの内容物をかき混ぜながら 15 分間抽出します。マグネチックスターラーを使用して (図 16)、ペーパーフィルターで濾過します。
米。 16. マグネチックスターラー
ろ過した肉エキス 2 ml を試験管に加え、ベンジジンの 0.2% アルコール溶液を 5 滴加え、試験管の内容物を振ってから、新たに調製した 1% 過酸化水素溶液を 2 滴加えます。
反応の説明: 健康な動物の肉 - 抽出物は青緑色になり、1 ～ 2 分以内に茶褐色に変わります (陽性反応)。 病気になったり、苦しみながら殺された動物の肉 - 抽出物は青緑色になり、数秒以内に茶色がかった茶色に変わります（疑わしい反応）。 死体肉 - 抽出物は特定の青緑色を獲得しないか、またはすぐに茶褐色が現れます（陰性反応）。
肉のpH測定
肉の pH は、電位差測定法と比色分析法によって測定されます。
電位差測定法。 肉の pH は、アナログまたはデジタル電位差計 (pH メーター) を使用して、特殊な電極ナイフを使用して肉に直接 (図 17)、または 1:10 の比率で調製された水性抽出物で測定されます。 抽出物を定期的に撹拌しながら 15 分間注入し、濾紙で濾過します。 pH の測定は、ポテンショメータ (pH メーター) の操作に関する説明書 (データシート) に従って実行されます。 動作中は、標準の緩衝液を使用してデバイスの正しい読み取り値を定期的に監視する必要があります。
ミカエリスコンパレータを用いた比色法。
反応を設定します。 肉エキスを 1:4 で調製します。ハサミで細かく切った肉サンプル 20 g をフラスコに入れ、蒸留水 80 ml を加えて 15 分間激しく撹拌し、濾紙で濾過します。
米。 18.ミカエリスコンパレーター
pH は、試験管に密封された色標準と、3 つずつ 2 列に配置された 6 つのネストを備えたコンパレーター (図 18) を使用して測定されます。 試験管をコンパレーターのソケットに挿入し、次のように満たします。2 ml の肉エキスを最初の列の試験管に加え、次に 5 ml の蒸留水を外側の試験管に加え、4 ml の蒸留水を加えます。および１ｍｌの指示薬（０．１％）を中央の試験管に添加する。 7 ml の蒸留水を 2 列目の中央の試験管に加え、標準物質を外側の巣に挿入し、水平の穴を通して観察したときにその色が試験管の内容物の色と一致するように選択します。真ん中の試験管。 肉の pH は、標準ラベルに示されている数値に対応します。
反応の説明: 健康な動物の肉の pH - 5.6 ～ 6.2。 病気の動物の肉の pH は 6.3 です。 死体肉の pH はアルカリ側にシフトし、6.4 を超えると 7 以上に達することがあります。
病気の動物や死体の肉の獣医学的および衛生的評価
屠体の官能特性が良好で、塗抹標本中に病原性微生物が存在せず、pH値が5.6〜6.2の範囲にあり、ペルオキシダーゼに対する陽性反応およびホルモルの陰性指標がある場合、肉は健康な動物から得られたものとみなされます。テストと硫酸銅との反応。
病気で過労になった動物の肉は、出血が不十分で、pHが6.3〜6.5の範囲にあり、ペルオキシダーゼに対する反応が疑わしく、ホルモール試験や硫酸銅との反応を行うと、抽出物中にフレークが形成されます。
苦しみの状態で殺された動物の肉は、出血が少なく、リンパ節がライラックピンクまたは青みがかった色をしており、pH 6.6 以上で、ペルオキシダーゼに対して陰性反応があり、ホルモールテストと硫酸銅との反応により、次のような反応が起こります。ゼリー状の塊。
苦しみながら殺された死体や動物から得られた肉や屠殺製品は、技術的処分のために送られます。
病気の動物から得た肉および屠殺製品の使用の問題は、食肉および肉製品の屠殺前検査および死後獣医師検査に関する規則（1988年以降）およびその他の現行の規制文書に従って診断を確立した後に決定されます。
健康な動物の肉は制限なく使用されます。
-急性骨髄性白血病
- 慢性リンパ性白血病
+未分化白血病
- 急性リンパ性白血病
-慢性骨髄性白血病
/\173。 止血の凝固機構の障害の発症において重要なのは、
-血小板数の減少
- 血小板機能不全
-血管障害
+ 第 VIII 因子欠損症
-血小板受容体IIb-IIIaの欠損
/\174。 血小板減少症の特徴は次のとおりです。
- 血漿凝固因子の欠乏
-血液凝固時間の延長
- 血腫の種類の出血
+ 点状出血
- 出血時間は正常です
/\175。 血小板の接着と凝集は次のように減少します。
・過剰なカルシウムとマグネシウム
- VIII f 血液凝固機能の欠損
-ADPの血中濃度の増加
-過剰なトロンボキサンA2
+ フォン・ヴィレブランド因子欠損症
/\176。 凝血促進物質の遺伝性欠乏症は、次の場合に発生します。
+ 血友病
-ビタミンK欠乏症
-肝不全
-凝固促進物質に対する抗体の形成
-プロトロンビン複合体因子のカルボキシル化障害
/\177。 血友病Aの特徴は次のとおりです。
-常染色体劣性遺伝のタイプ
-IX血液凝固機能の欠如
- 点状出血、斑状出血
+関節炎
・出血時間の延長
/\178。 フォン・ヴィレブランド病の特徴は次のとおりです。
- 毛細血管出血の持続時間の短縮
-血液凝固時間を短縮する
- 血小板凝集能の増加
-第 VIII 因子の合成障害
+第 VIII 因子の凝固促進活性の低下
/\179. DIC症候群における凝固亢進の発症において重要です。
+ 「外部」および「内部」の血液凝固機構の活性化
-低フィブリノゲン血症
-血液の線溶系の活性化
-過剰なアンチトロンビンIII
-血小板症
/\180。 DIC 症候群における凝固低下の病因では、次のことが重要です。
+ 凝固障害および血小板減少症の摂取
-過剰な凝固促進剤
- 大量の組織トロンボプラスチンが血液中に入る
-線溶阻害剤の活性化
- アンチトロンビン III 欠損症
/\181。 新生児における DIC 症候群の最も重篤な段階
+凝固低下
-凝固亢進
-移行期
-回復
-ターミナル
/\181。 新生児の出血性疾患の臨床症状には以下のものがあります。
+下血、臍の傷からの出血
- 皮膚や粘膜が黄色くなる
-核黄疸
-高ビリルビン血症
-浮腫
/\182。 血友病Aでは、
+活性プロトロンビナーゼの形成
-プロトロンビンからトロンビンへの移行
-フィブリノーゲンのフィブリンへの移行
-血液凝固の第二段階
-血液凝固の第3段階
/\183。 血液凝固亢進は次の場合に発生します。
・過剰なプロテインC
・プロテインSの過剰摂取
-アンチトロンビンIIIの過剰
+プロテインCに対する第V因子耐性
-無フィブリノゲン血症
/\184。 神経系に損傷を引き起こす外因性の病因
+アルコール中毒
-肝性昏睡におけるニューロンへの損傷
-脳虚血
-低血糖症
-尿毒症による神経細胞の損傷
/\185。 神経導体を通って神経系に侵入します
-レンサ球菌外毒素
-髄膜炎菌
-肺炎球菌
- 大腸菌
+狂犬病ウイルス
/\186。 海綿状伝染性脳症の原因
-サイトメガロウイルス
-エンテロウイルス
-狂犬病ウイルス
-ヘルペスウイルス
+プリオン
/\187。 ニューロンの細胞内封入体を形成するウイルス
-サイトメガロウイルス
-エンテロウイルス
+狂犬病ウイルス
-ヘルペスウイルス
-多発性脊髄炎ウイルス
/\188。 ブレーキの効きが悪いというのは、
+ 中枢神経系の下層部分を上層部分の制御から解放する
-シナプス後構造に対する神経影響の軽減
/\189。 脱神経症候群というのは、
-栄養原体の輸送障害と病原体形成
-ニューロンへの求心性インパルスの減少
- 中枢神経系の下層部分を上層部分の制御から解放する
+シナプス後構造に対する神経影響の軽減
- 活動亢進ニューロンのグループ
/\190。 一次抑制欠損は次の原因で発症します。
-神経系の過剰な刺激
+ 抑制性ニューロンの構造と機能の障害
-興奮性メディエーターの合成の増加
/\191。 二次抑制欠損は次の原因で発生します。
+ 過剰なニューロン活動を引き起こす興奮性アミノ酸の脱分極剤の作用
-抑制性ニューロンの構造と機能の障害
- 興奮性シナプスの構造と機能の障害
-興奮性メディエーターの合成の減少
-神経系の一部が破壊される際の下行性抑制作用の過剰
/\192。 脱抑制症候群の結果として考えられるのは、
-ニューロンおよび神経支配構造におけるジストロフィー性変化の発生
+ GPUS（病的に増強された興奮の発生器）の形成
-除神経症候群の発症
-臓器萎縮の発症
-求心路遮断症候群の発症
/\193。 病理学的に強化された励起発生器 (PAG) は、
+ 制御されていないインパルスの流れを生成する、過剰に活動し相互作用するニューロンの集合体
- 一連のカスケード膜および細胞内プロセス
- シナプス構造の変化の複合体
- 神経の影響の喪失または変化によって引き起こされる栄養障害
シナプス後ニューロン、器官、組織に対する神経の影響が失われた後に、これらの構造に起こる変化の複合体
/\194。 GPUV教育の重要性
-びまん性阻害の形成を促進します
+ は病理学的システムの決定因子であり、病理学的システムの形成に寄与します
- 生理学的システムの形成を促進します
- 神経支配構造に対するニューロンの栄養的影響を増加させる
-神経病理学的プロセスの発達を阻害します
/\195。 遅い多動には次のものがあります。
-痙攣
+アテトーゼ
-ティック
-舞踏病
-身震い
/\196。 神経症は発症につながる可能性があります
+ 十二指腸潰瘍
-髄膜炎
- 海綿状伝染性脳症
-脳炎
-アルツハイマー病
/\197。 中枢性麻痺は次のような特徴があります。
- 随意運動の維持
-腱反射の弱体化
+腱反射の増加
-病的な反射の欠如
-筋緊張の低下
/\198。 末梢麻痺の特徴は、
-脊髄反射の増加
-病的な反射の出現
- 筋肥大
+筋緊張低下
- 筋緊張亢進
／\203。 疼痛メディエーターには次のものがあります。
- アドレナリンの生理的濃度
-エンケファリン
-エンドルフィン
+ブラジキニン
-ダイノルフィン
/\204 痛みの感覚は形成されます。
-侵害受容器
-神経幹
-脊髄
-網状形成
+ 視床および大脳皮質のニューロン
/\205。 最も痛みを感じやすい
+ 皮膚と粘膜
-肝臓
-脳
-脊髄
-心筋
／\206。 ファントムペインは痛みだ
-狭心症の発作時の左腕と左肩甲骨
- 急性肝炎または壁側腹膜の炎症における鎖骨の上
- 脳疾患の場合
+ 身体の欠損部分、ほとんどの場合四肢の切断後
- 膵炎による帯の痛み
/\207. 幻肢痛の発症において、それらは重要です。
-侵害受容器の感受性の増加
-神経幹の伝導性の増加
-大脳皮質の興奮性の増加
切断神経腫の形成と脊髄における病的に増強された興奮の発生器の形成
-脳幹の興奮性の抑制
/\208.抗侵害受容システムには以下が含まれます。
-ブラジキニン
+ゼラチン状物質
-イオンH、K
-ヒスタミン
-サブスタンスP
/\209.肌をこするときやマッサージをしたときの痛みの感覚の低下は、次の原因によるものです。
-侵害受容器の感受性の低下
- 神経伝導体の遮断
-網様体ニューロンの興奮性の低下
-視床ニューロンの興奮性の抑制
+ 脊髄のゼラチン状物質の活性化
/\211。 糖尿病性高浸透圧性昏睡の病因における主要な関連性は次のとおりです。
+高血糖
-ケトーシス
-乳酸血症
-低酸素症
-高窒素血症
/\212。 虚血性脳卒中は次のような原因で引き起こされる可能性があります。
+脳血管の血栓症または塞栓症
- 脳動脈瘤の破裂
- 脳血管性ジストニア
- 脳の動脈充血
- 血液凝固の減少
/\213。 出血性脳卒中の原因として考えられるのは、
+ 動脈性高血圧
-脳血管の狭窄性アテローム性動脈硬化症
- 脳血管の血栓症と塞栓症
-脳血管の血管けいれん
-ヘマトクリットの増加
/\214。 虚血性脳卒中では、出血性脳卒中とは対照的に、多くの場合、臨床像は次のようなものによって支配されます。
-脳浮腫
+局所症状
-脳脊髄液中の血液
-脳組織の圧迫
-頭蓋内圧の上昇
/\215。 小脳失調症、時事記憶障害、眼振、構音障害、嚥下障害、しゃっくり、めまいが特徴的な損傷です。
+椎骨動脈（後下小脳動脈）
-前大脳動脈
-中大脳動脈
-後大脳動脈
-軟膜動脈
/\216。 手足（近位腕および遠位脚）の麻痺または痙性麻痺、損傷すると病変の反対側の感覚喪失が観察されます。
・椎骨動脈（後下小脳動脈）
+前大脳動脈
-中大脳動脈
-後大脳動脈
-軟膜動脈
/\217。 虚血性脳卒中と診断された64歳の患者Mは、左側のバビンスキー反射陽性、体の左側の感度の喪失と診断されました。